나뭇잎 교과서

PCR 유전자 증폭

온도를 오르내리게 하는 것만으로 원하는 DNA 부분을 몇 시간 만에 수억 배로 늘릴 수 있습니다. 띠가 안 나오거나 엉뚱한 띠가 나올 때는 무엇을 고쳐야 할까요?

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PCR 유전자 증폭

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범죄 현장의 머리카락 한 올에는 DNA가 아주 적어서 그대로는 전기 영동 띠조차 보이지 않는다. PCR 기계에 넣고 온도를 95 °C, 55 °C, 72 °C로 바꾸는 과정을 30번 되풀이하자, 원하는 부분의 DNA가 젤에서 뚜렷한 띠로 보일 만큼 늘어났다. 처음에 100분자였다면 30번 뒤에는 몇 분자일까? 실제로 매번 정확히 두 배가 되지 않는다면 결과는 얼마나 달라질까?

단계온도하는 일 변성95 °C이중 가닥이 두 가닥으로 풀림 결합55 °C 안팎프라이머가 증폭할 부분의 양 끝에 붙음 신장72 °C중합 효소가 프라이머에 이어 새 가닥 합성 한 주기에 원하는 부분의 DNA가 두 배가 된다
그림 1. 변성, 결합, 신장의 세 단계가 한 주기이며, 주기마다 프라이머 사이의 DNA가 두 배로 늘어난다.
먼저 알아야 할 것DNA 복제, 효소와 온도(효소 반응 속도의 요인), 지수와 로그, DNA 전기 영동(DNA 전기 영동).

5.7.1주기마다 두 배

PCR은 시험관 안에서 DNA 복제를 되풀이하는 방법이다. 95 °C로 데우면 두 가닥을 잇는 수소 결합이 끊어져 가닥이 풀린다. 온도를 55 °C 안팎으로 내리면 증폭하고 싶은 부분의 양 끝에 맞게 만든 짧은 DNA인 프라이머가 가닥에 붙는다. 72 °C에서 열에 강한 DNA 중합 효소가 프라이머에 이어 새 가닥을 만든다. 이 세 단계가 끝나면 원하는 부분이 두 배가 되고, 새로 만든 가닥도 다음 주기의 주형이 되므로 주기마다 다시 두 배가 된다.

정리 5.7.1 PCR 증폭량

처음 \(N_0\)분자에서 주기마다 효율 \(E\)(0에서 1)로 늘어나면 \(n\)주기 뒤의 분자 수는 \[N = N_0(1 + E)^n\]이다. 효율이 100%이면 \(N_0 \times 2^n\)이다.

두 배씩 늘어나는 증가는 처음에는 작아 보이지만 금방 커진다. 10주기에 약 1000배, 20주기에 약 100만 배, 30주기에 약 10억 배이다. 그래서 몇 분자의 DNA로도 두 시간 남짓이면 분석할 수 있을 만큼 늘어난다. 그러나 효율이 조금만 떨어져도 30번 거듭 곱해지므로 결과가 크게 줄어든다. 또 프라이머와 재료가 떨어지면 증가가 멈추어, 끝없이 늘어나지는 않는다.1

5.7.2오염에 민감한 방법

PCR은 아주 적은 DNA도 늘리므로, 실험하는 사람의 피부 세포나 이전 실험에서 날아온 DNA 한 조각이 섞여도 그것까지 늘어난다. 그래서 장갑을 끼고, 필터가 달린 팁을 쓰며, 시료를 넣지 않은 음성 대조를 함께 돌린다. 음성 대조에서 띠가 나오면 시약이 오염된 것이다. 프라이머가 원하는 자리에만 붙도록 결합 온도를 알맞게 정하는 것도 중요하다. 온도가 너무 낮으면 비슷한 다른 자리에도 붙어 원하지 않는 띠가 생긴다.

효율한 주기 배수100분자에서 30주기 뒤 100%2.0약 1.1 × 10¹¹ 90%1.9약 2.3 × 10¹⁰ 80%1.8약 4.6 × 10⁹
그림 2. 효율이 100%에서 80%로 줄면 30주기 뒤의 양은 20분의 1 넘게 줄어든다.

5.7.3예제 풀이

예제 5.7.2

처음 100분자를 30주기 증폭할 때 효율 100%와 90%의 결과를 구하여라. 효율 100%에서 어떤 시료가 다른 시료보다 3주기 일찍 같은 양에 도달했다면, 처음 DNA의 양은 몇 배였는가?

효율 100%이면 \(100 \times 2^{30} \approx 100 \times 1.07 \times 10^9 \approx 1.1 \times 10^{11}\)분자이다. 90%이면 \(100 \times 1.9^{30} \approx 100 \times 2.3 \times 10^8 = 2.3 \times 10^{10}\)분자로 5분의 1에 못 미친다. 처음 질문의 1000억 분자는 효율이 거의 100%일 때의 값이다.

한 주기마다 두 배이므로, 3주기 일찍 같은 양에 도달한 시료는 처음 양이 \(2^3 = 8\)배 많았다. 실시간 PCR은 이 원리로 형광이 일정한 세기에 이르는 주기 수를 재어 처음 DNA의 양을 비교한다. 주기 수가 3.3 차이 나면 처음 양은 10배 차이이다. 즉 PCR은 주기마다 두 배가 되는 지수적 증가로 아주 적은 DNA를 늘리고, 그 지수적 성질을 거꾸로 써서 처음 양을 잰다.

아래 탐구 카드에서 PCR의 세 단계와 주기에 따른 DNA 양의 변화를 따라가 보자.

  1. PCR은 1983년 미국의 멀리스가 고안해 1993년 노벨 화학상을 받았다. 처음에는 95 °C마다 효소가 망가져 주기마다 새 효소를 넣어야 했지만, 온천 세균에서 얻은 열에 강한 Taq 중합 효소 덕분에 자동으로 돌릴 수 있게 되었다.
마무리

PCR은 변성, 결합, 신장의 세 단계를 되풀이해 프라이머 사이의 DNA를 주기마다 두 배로 늘리며, \(n\)주기 뒤의 양은 \(N_0(1 + E)^n\)이다. 효율이 조금만 떨어져도 거듭 곱해져 결과가 크게 줄고, 아주 적은 오염 DNA도 늘어나므로 음성 대조를 함께 돌린다. 처음 질문의 100분자는 효율 100%로 30주기를 돌면 약 1000억 분자가 된다.

탐구 1

PCR은 아주 적은 양의 바이러스를 어떻게 찾아낼까?

유전자 증폭 · 로그 눈금 · 모식 모형
사이클
—
DNA 조각 수
—
Ct (기준선 도달)
—
처음보다
—

검출 기준선을 10¹⁰개, 재료가 떨어져 증폭이 멈추는 양을 10¹²개로 잡은 모식 모형이다. 실제 기기는 형광 세기로 기준선을 정하고, 그 값은 기기와 시약마다 다르다.

  1. 질문면봉에 묻어 나온 바이러스 유전자는 수십에서 수천 개 정도일 수 있다. 이렇게 적은 양은 어떤 기계로도 바로 볼 수 없다. 그런데 PCR 검사는 이것을 찾아낸다. 어떻게 할까?
  2. 복원DNA는 두 가닥이 A와 T, G와 C로 짝을 지은 이중 나선이다. 그래서 한 가닥의 염기 서열을 알면 짝이 되는 가닥의 서열도 정해진다. 또 열을 가하면 두 가닥이 떨어진다.
  3. 설명PCR 한 사이클은 세 단계이다. 약 95 °C로 가열해 두 가닥을 떼고, 온도를 낮춰 찾고 싶은 서열에만 붙는 짧은 조각(프라이머)을 붙인 뒤, 약 72 °C에서 효소가 짝 가닥을 이어 만든다. 그러면 목표 조각이 한 사이클마다 이론상 2배가 된다.
  4. 연결2배씩 늘면 n사이클 뒤에는 N = N0 × 2n이어서, 30사이클이면 2³⁰ ≈ 10억 배가 된다. 실시간 PCR은 늘어난 DNA에 붙어 빛을 내는 형광 물질로 양을 재고, 형광이 기준선을 넘는 사이클을 Ct라고 부른다. 코로나19 바이러스처럼 유전 물질이 RNA인 경우에는 먼저 RNA를 DNA로 바꾸는 역전사 과정을 거친다(RT-PCR).
  5. 적용보통 눈금에서는 곡선이 한참 바닥에 붙어 있다가 갑자기 솟는다. 그런데 ‘로그 눈금’을 켜면 같은 곡선이 곧은 직선이 된다. 이제 ‘10배씩 묽힌 시료’를 켜면 시료가 10배 적을 때마다 Ct가 약 3.3사이클씩 늦어지고, 효율을 90%로 낮추면 그 간격이 조금 넓어진다.
  6. 판단Ct가 작을수록 처음 시료에 유전자가 많았다는 뜻이지만, Ct만으로 ‘전염력’을 단정할 수는 없다. PCR은 유전자 조각을 찾을 뿐 살아 있는 바이러스를 세지 않기 때문이다. 그래서 회복한 뒤에도 한동안 양성이 나올 수 있고, 검체를 채취한 방법에 따라서도 Ct가 달라진다. 실제 효율은 100%보다 조금 낮다.

확인조건이 달라지면

같은 기기, 효율 100%로 두 시료를 검사했다. 시료 A의 Ct는 22, 시료 B의 Ct는 25이다. 처음 시료에 들어 있던 목표 유전자의 양은?

탐구 2

온도만 오르내리게 했는데 DNA가 왜 수억 배로 늘어날까?

실험 · PCR 유전자 증폭 · 온도 프로그램과 시약의 역할
프라이머 쌍
증폭할 길이
넣은 시약

반응 50 μL, 처음 주형 10⁵개, 프라이머 0.5 μM, dNTP 각 0.2 mM을 가정한 모식 모형이다. 녹는 온도(Tm)는 짧은 프라이머에 쓰는 어림식 Tm ≈ 2×(A+T) + 4×(G+C) °C로 계산했다. 생성량은 젤 띠 밝기를 크기 표준과 비교해 어림한 값이라 ±30%쯤 흔들리고, 약 2 ng보다 적으면 띠가 보이지 않는다. 그래프의 점선은 매 사이클 정확히 두 배가 되는 이상적인 경우이다.

  1. 탐구 문제머리카락 한 올, 침 한 방울 속 DNA는 너무 적어 분석할 수 없다. PCR 기기는 시험관의 온도를 오르내리게 할 뿐인데, 어떻게 원하는 부분만 수억 배로 늘릴까? 결과가 나오지 않으면 무엇을 의심해야 할까?
  2. 복원DNA 중합 효소는 이미 있는 가닥의 3′ 끝에만 뉴클레오타이드를 이어 붙이고, 주형과 상보적인 새 가닥을 만든다. 그래서 복제를 시작할 짧은 가닥, 곧 프라이머가 필요하다. 두 프라이머가 증폭할 부분의 양 끝을 정한다.
  3. 설계한 사이클은 변성(94~98 °C, 두 가닥 분리) → 결합(보통 프라이머 Tm보다 3~5 °C 낮게, 프라이머가 주형에 붙음) → 신장(72 °C, 1 kb에 약 1분)이다. 시약의 역할을 보면 주형 DNA(복사할 원본), 프라이머 쌍(증폭 범위), dNTP(재료), 고온에서도 변성되지 않는 Taq 중합 효소, Mg²⁺(중합 효소의 보조 인자). 주형만 뺀 반응(음성 대조군)을 함께 돌린다.
  4. 분석효율이 100%이면 n 사이클 뒤 표적은 N = N₀ × 2ⁿ, 효율이 E이면 N₀ × (1 + E)ⁿ이다. log N을 그리면 처음에는 직선(기울기 log 2)이다가 프라이머와 dNTP가 바닥나며 정체기에 이른다. 그래서 끝난 뒤의 생성량만으로는 처음 양을 비교하기 어렵다.
  5. 측정프라이머 A, 500 bp, 기본 프로그램으로 돌려 띠를 확인해 보자. 결합 온도를 46 °C, 66 °C로 바꾸고, 3,000 bp를 신장 30초로 증폭해 보자. 프라이머 B와 C에서는 어떤 띠가 생기는가? 시약을 하나씩 빼 각 시약의 역할을 확인해 보자.
  6. 오차·안전결합 온도가 너무 낮으면 프라이머가 비슷한 다른 자리에도 붙어 엉뚱한 띠가 생기고, 너무 높으면 붙지 못해 띠가 약해진다. 프라이머 3′ 끝끼리 상보적이면 프라이머끼리 붙어 아주 짧은 프라이머 이합체 띠가 생긴다. PCR 산물은 아주 많아서 실험실을 쉽게 오염시키므로, 반응 준비와 전기 영동 공간을 나누고 필터 팁을 쓴다. 가열 블록은 뜨거우므로 뚜껑이 식은 뒤 연다.

확인조건이 달라지면

음성 대조군(주형 DNA를 넣지 않은 튜브)에서 표적과 같은 크기의 띠가 나왔다. 가장 먼저 의심할 것은?

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